К ВОПРОСУ О СТАНДАРТНОМ ОПРЕДЕЛЕНИИ СЛУЧАЯ КЛЕЩЕВЫХ ВОЗВРАТНЫХ ЛИХОРАДОК

Введение. Клещевые трансмиссивные инфекции вызывают боррелии, относящиеся к группам Лайм боррелиоза, вызываемых геновидами Borrelia burgdorferi sensu lato, и возвратных лихорадок, к которым относится Borrelia miyamotoi.

Цель работы. Разработка стандартного определения случая клещевых возвратных лихорадок для проведения дифференциальной диагностики с инфекциями со сходными клиническими проявлениями, а также понимания широкой медицинской общественностью их клинических проявлений и особенностей лабораторной диагностики.

Материалы и методы. Проведен анализ клинико-эпидемиологических проявлений подтвержденных случаев клещевых возвратных лихорадок по данным литературных источников; выполнено исследование методом полимеразной цепной реакции 521 клеща, собранного с растительности, и 54 клещей, снятых с укушенных лиц, а также самих укушенных в динамике и 42 лихорадящих больных методом иммуночипа. Полимеразная цепная реакция была положительнойу 27/521 (5,2 %) и 1/54 (1,9 %) клещей, соответственно. Из 61 образца, полученного от пациентов, 8,2 % (5/61) были положительные по антителам к различным антигенам боррелий.

Результаты. Разработанное на основе литературных данных определение, состоящее из этапов предположительного, вероятного и подтвержденного случая, было применено для выявления случаев клещевой возвратной лихорадки, при этом все эти случаи соответствовали стандартному определению.

Выводы. Таким образом, клещевые возвратные лихорадки имеют распространение в группе лихорадок неясной этиологии и укушенных клещами людей, хотя эта инфекция не входит в официальную регистрацию и, соответственно, отсутствует эпидемиологический надзор. Для повышения осведомленности и настороженности у медицинских работников разработано стандартное определение случая боррелиозных клещевых возвратных лихорадок, которое так же, как разработанный протокол лабораторной диагностики, необходимо широко внедрить в систему эпиднадзор за клещевыми инфекциями в регионах Республики Казахстан.

1. Parte, A. C., Sardà Carbasse, J., Kolthoff-Meier, J. P., Reimer, L. C., & Göker, M. (2020). List of prokaryotic names with standing in nomenclature (LPSN) moves to the DSMZ. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 70, 5607-5612. DOI: https://doi.org/10.1099/ijsem.0.004332.

2. Güner, E. S., Watanabe, M., Hashimoto, N., et al. (2004). Borrelia turcica sp. nov., isolated from the hard tick Hyalomma aegyptium in Turkey. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 54(5), 1649-1652. DOI: https://doi.org/10.1099/ijs.0.03050-0.

3. Loh, S. M., Gillett, A., Ryan, U., et al. (2017). Molecular characterization of Candidatus Borrelia tachyglossi (family Spirochaetaceae) in echidna ticks, Bothriocroton concolor. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 67(4), 1075-1080. DOI:https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001929.

4. Loh, S. M., Gofton, A. W., Lo, N., et al. (2016). Novel Borrelia species detected in echidna ticks, Bothriocroton concolor, in Australia. Parasites & Vectors, 9, 339. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-016-1627-x.

5. Panetta, J. L., Šíma, R., Calvani, N. E. D., et al. (2017). Reptile-associated Borrelia species in the goanna tick (Bothriocroton undatum) from Sydney, Australia. Parasites & Vectors, 10, 616. DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-017-2579-5.

6. Takano, A., Goka, K., Une, Y., et al. (2010). Isolation and characterization of a novel Borrelia group of tick-borne borreliae from imported reptiles and their associated ticks. Environmental Microbiology, 12(1), 134-146. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2009.02054.x.

7. Adeolu, M., & Gupta, R. S. (2014). A phylogenomic and molecular marker-based proposal for the division of the genus Borrelia into two genera. Antonie van Leeuwenhoek, 105(6), 1049-1072. DOI: https://doi.org/10.1007/s10482-014-0164-x.

8. Margos, G., Marosevic, D., Cutler, S., et al. (2017). There is inadequate evidence to support the division of the genus Borrelia. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 67(4), 1081-1084. DOI: https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001717.

9. Chekanova, T. A., & Manzeniuk, I. N. (2021). Tick-borne relapsing fever and genospecies diversity of Borrelia: Current status. Epidemiology and Vaccinal Prevention, 20(6), 108-116. DOI: https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-6-108-116 (In Russian).

10. Ostapchuk, Y. O., Bissenbay, A. O., Kuligin, A. V., et al. (2024). Survey of tick-borne relapsing fever Borrelia in the south and southeastern regions of Kazakhstan. Ticks and Tick-borne Diseases, 15(6), 102398. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2024.102398.

11. Binetruy, F., Garnier, S., Boulanger, N., et al. (2020). A novel Borrelia species in neotropical passerine-associated ticks. Scientific Reports, 10, 10596. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-020-66828-7.

12. Dmitrovskiy, A. M., Ospanbekova, N. K., Eralieva, L. T., et al. (2020). Borrelioses: Etiology, distribution, pathogenesis, clinical aspects, treatment, epizootology, epidemiology, prevention, and system of epidemiological surveillance (Methodological recommendations). Almaty, Kazakhstan: National Center for Biotechnology. (In Russian).

13. Hoornstra, D., Stukolova, O. A., Karan, L. S., et al. (2022). Development and validation of a protein array for detection of antibodies against Borrelia miyamotoi. Microbiology Spectrum, 10(6), e0203622. DOI: https://doi.org/10.1128/spectrum.02036-22.

14. Ostapchuk, E. O., Bissenbay, A. O., Kuligin, A. V., et al. (2024). Prevalence of Borrelia miyamotoi in the Almaty and Zhetysu regions of Kazakhstan. In Proceedings of the International Conference “Astana Biotech 2024” (p. 162). Astana, Kazakhstan.

15. Dmitrovskiy, A. M., Sharapov, M. B., Zheteeva, E. A., et al. (2008). Application of standard case definitions of especially dangerous infections (Textbook). Shymkent, Kazakhstan. (In Russian).

16. Parte, A. C. (2018). LPSN – List of prokaryotic names with standing in nomenclature (moving to DSMZ). International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 68(12), 3845-3847. DOI: https://doi.org/10.1099/ijsem.0.002786.

17. Rudenko, N., Golovchenko, M., Grubhoffer, L., & Oliver, J. H. (2016). Updates on Borrelia burgdorferi sensu lato complex with respect to public health. Ticks and Tick-borne Diseases, 7(2), 171-178. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2015.10.012.

18. Mitjà, O., Marks, M., Konan, D. J. P., Ayelo, G., Gonzalez-Beiras, C., et al. (2015). Global epidemiology of yaws: A systematic review. The Lancet Global Health, 3, 324-331. DOI: https://doi.org/10.1016/S2214-109X(15)00011-X.

19. Yabsley, M. J. (2010). Natural history of Ehrlichia chaffeensis: Vertebrate hosts and tick vectors from the United States and evidence for endemic transmission in other countries. Veterinary Parasitology, 167, 136-148. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2009.09.015.

20. Unsworth, N. B., Stenos, J., Graves, S., et al. (2007). Flinders Island spotted fever rickettsioses caused by the “marmionii” strain of Rickettsia honei. Emerging Infectious Diseases, 13(4), 566-573. DOI: https://doi.org/10.3201/eid1304.050087.

21. Unsworth, N. B., Stenos, J., McGregor, A. R., Dyer, J. R., & Graves, S. R. (2005). Not only “Flinders Island” spotted fever. Pathology, 37(3), 242-245. DOI: https://doi.org/10.1080/00313020500099247.

22. Vilcins, I. M., Old, J. M., & Deane, E. (2009). Molecular detection of Rickettsia, Coxiella, and Rickettsiella DNA in three native Australian tick species. Experimental and Applied Acarology, 49(3), 229-242. DOI: https://doi.org/10.1007/s10493-009-9260-4.